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小編為您推薦： vector 分子生物學(xué)軟件醫(yī)學(xué)軟件

vector nti破解版分享給大家，vector nti advance 11完美破解的喲，包括了詳細(xì)的安裝破解教程和crack文件，it貓撲網(wǎng)小編親測可以使用，沒有下載或者不會(huì)的趕緊拿走吧。

vector nti advance介紹

Vector NTI是一套功能強(qiáng)大、界面美觀而又友好的分子生物學(xué)應(yīng)用軟件包。它主要包括四個(gè)組件，分別對(duì)DNA、RNA和蛋白質(zhì)進(jìn)行各種分析和操作。

vector nti advance11.5.1

vectorntiadvance11.5.1破解安裝說明

到it貓撲網(wǎng)下載vectorntiadvance11.5.1的安裝程序和破解補(bǔ)丁

先運(yùn)行安裝程序，這里小編提示，一定要以管理員身份運(yùn)行，特別是win10、win8等用戶

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接受許可，繼續(xù)安裝

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安裝位置大家可以自己選擇，貓撲網(wǎng)只是供測試的，默認(rèn)在c盤

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根據(jù)自己的需要選擇vector nti advance安裝類型

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稍等一會(huì)兒

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ok，vector nti advance11.5.1已經(jīng)安裝完成了，安裝完成后重啟計(jì)算機(jī)建議

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打開選擇的crack文件夾，復(fù)制所有的破解文件

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把破解文件復(fù)制到安裝后的程序文件夾下（默認(rèn)為C:\Program Files\Invitrogen\Vector NTI Advance 11\），替換原文件即可。

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打開vector nti advance，用破解文件替換原文件后，打開Vector NTI，如果發(fā)現(xiàn)沒有破解成功，（是否破解成功的判斷方法：Demo mode時(shí)（未破解成功），窗口右下角有個(gè)紅色×；Dynamic license時(shí)，窗口右下角變成一個(gè)綠色的√。）請(qǐng)按照以下操作進(jìn)行

請(qǐng)打開“Help”菜單中的“License Manager”，在Applications選項(xiàng)卡中，將所有程序后面的“Demo mode”，都改為“Dynamic license”。

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然后退出軟件，下次打開時(shí)就能正常使用了。如下圖右下角已經(jīng)綠色的勾，說明破解成功了

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vector nti advance功能

一，Vector NTI

作為Vector NTI Suite的核心組成部分，它可以在各種分子生物學(xué)研究項(xiàng)目的全過程中提供數(shù)據(jù)組織、編輯和分析支持。

（一）對(duì)分子序列的操作

我們以一個(gè)DNA序列為例，進(jìn)行一系列的常規(guī)分析；最后將此DNA序列翻譯成氨基酸序列，并對(duì)此氨基酸序列進(jìn)行各種分析。

A，DNA序列為豬生長激素的cDNA序列，長為761bp。首先使用Vector NTI的Create New命令將此序列導(dǎo)入到Vector NTI的數(shù)據(jù)庫中：

1，第一種方法：如果只知道序列時(shí)，點(diǎn)擊Molecule才菜單中的Create New——Using Sequence Editor（DNA/RNA……）；

2，在出現(xiàn)的“New DNA/RNA Molecule”對(duì)話框中，首先在General填入導(dǎo)入序列的名稱——PGH；

3，在DNA/RNA Molecule活頁中，選中Linear DNA， Animal/other Eukaryotes，Replicon Type中選Chromosome；

4，Description中填入：S.Scrofa Growth hormone mRNA;

5，在Sequence and Maps中點(diǎn)擊“Edit Sequence”按鈕，將DNA序列復(fù)制后，點(diǎn)“Paste”按鈕-點(diǎn)“OK”－確認(rèn)后就可以完成序列導(dǎo)入。

B，如果是一個(gè)從GenBank上下載的序列文件，則：點(diǎn)擊 “Molecule” 菜單-Open-Molecule files命令，找到序列文件，在File format中選中GenBank Files；點(diǎn)擊OK。

（二）常規(guī)操作：

當(dāng)序列導(dǎo)入完成后，在桌面出現(xiàn)三個(gè)窗口，上左側(cè)的窗口中顯示的是該序列的常規(guī)信息，上右側(cè)窗口則以圖形的格式展示序列的特征區(qū)及酶切圖譜等。下面一個(gè)窗口顯示的是序列：默認(rèn)狀態(tài)下以雙鏈形式出現(xiàn)，也可以更改為單鏈顯示。

1．選擇序列區(qū)域：在圖形區(qū)域或序列區(qū)域直接拖動(dòng)鼠標(biāo)左鍵，同時(shí)在最下端的狀態(tài)欄中顯示出所選區(qū)域的范圍。

2．刪除：選中后直接點(diǎn)擊鍵盤上的Delete鍵，確認(rèn)后即可刪除。

3．選中序列片段后，點(diǎn)擊Edit菜單，用其中的命令可以完成對(duì)此片段的剪切、復(fù)制、刪除、定義為新的特征區(qū)和用其它序列來代替等。

4．當(dāng)點(diǎn)在其一特定位置時(shí)，我們也可以在此位置插入新的序列：Edit – New – Insert Sequence as

5．當(dāng)希望序列顯示單鏈時(shí)，點(diǎn)擊View – Show Both Strands

（三）常規(guī)分析：

1．設(shè)計(jì)PCR Sequence Primer, Hybridization, Probes：

選中設(shè)計(jì)引物的模板區(qū)或點(diǎn)擊Analyze中的相應(yīng)命令即可。

需要注意的是，在設(shè)計(jì)前，首先得將序列存入數(shù)據(jù)庫中，具體設(shè)計(jì)由于我們推薦使用Oligo，所以此處不詳述。

2．序列基本信息分析：

選中序列區(qū)段后，選Analyze – Oligo Analysis, 在Oligo Analysis對(duì)話框中，點(diǎn)擊Analyze按鈕，即可得到分子量、GC含量、Tm值、3‘端的自由能、回文結(jié)構(gòu)及重復(fù)序列等基本信息。

3．酶切圖譜分析

點(diǎn)擊Analyze菜單中Restriction Sites命令，出現(xiàn)“Restriction Map Setup”對(duì)話框，點(diǎn)擊Add按鈕，填入需要分析的位點(diǎn)，不需要的位點(diǎn)夜可以選中后點(diǎn)Remove按鈕移除。為了顯示正確，我們可以設(shè)定超過一定位點(diǎn)數(shù)量的酶不顯示，可以限定分析的區(qū)域等。點(diǎn)擊OK后程序自動(dòng)完成酶切分析。

4．Motif查找

點(diǎn)擊Analyze菜單中的Motifs命令，在出現(xiàn)的Motifs Setup對(duì)話框中我們可以添加新的Oligo或從Oligo Database和Oligo List中選取；選中后點(diǎn)擊OK按鈕，程序完成Motif的查找，同時(shí)給出相似性的百分比。

5．ORF查找

點(diǎn)擊Analyze菜單中的ORF命令，在出現(xiàn)的ORF Setup對(duì)話框中，填入ORF的最小長度（多少個(gè)密碼子）以及其它一些設(shè)定后點(diǎn)擊OK，程序自動(dòng)完成ORF的查找。

6．翻譯

翻譯前選中一個(gè)ORF或一個(gè)區(qū)域，這里我們希望把pGH cDNA基因完全翻譯成蛋白質(zhì)，因此選中最長的一個(gè)ORF（7－657bp）。點(diǎn)擊Analyze菜單中的Translate命令中的“Into New Protein”-“Direct Strand”,在出現(xiàn)的“New Protein Molecule”對(duì)話框中給出新蛋白質(zhì)的名稱后點(diǎn)擊確定，程序完成翻譯并打開一個(gè)新的窗口，顯示氨基酸序列。

7．反翻譯

選中氨基酸序列片斷，點(diǎn)擊Analyze菜單中的BackTranslate命令，確認(rèn)是“整個(gè)序列”還是“僅為選中的序列”后，即可設(shè)定簡并度及組織特異性來完成反翻譯。

（三）模擬電泳：

模擬電泳是指對(duì)DNA片段進(jìn)行酶切分析后，通過電腦模擬電泳過程，將酶切片段分離。該功能有利于評(píng)估電泳時(shí)間，便于驗(yàn)證實(shí)際電泳結(jié)果的好壞。

1．點(diǎn)擊Gel菜單 – Create New命令：出現(xiàn)Gel Setup對(duì)話框，首先選擇電泳介質(zhì)的類型－“Agarose Gel”，以及膠的濃度、電壓、膠長和Buffer種類。

2．點(diǎn)擊OK后即打開一個(gè)電泳界面，左側(cè)是對(duì)電泳情況的描述，右側(cè)則為膠板。

3．首先配置一個(gè)Marker：點(diǎn)Gel菜單 – Create Gel Marker, 出現(xiàn)New Gel Marker對(duì)話框, 首先輸入Marker的名稱：pGH-Marker，在Gel Marker活頁中輸入自己設(shè)定的片段，100，200，300，400，500，600，1000bp,點(diǎn)擊確定。

4．樣品制備：點(diǎn)Gel菜單 – Create Gel Sample命令出現(xiàn)Create Gel Sample對(duì)話框，選擇來源分子SSPGH，選中AvaI和SmaI兩個(gè)酶，輸入Sample的名稱SSPGH- AS。此時(shí)我們可以把酶切的片段直接加入到膠上，也可以加入到樣品列表中或保存為Marker，我們點(diǎn)擊Add to Gel，則在膠上出現(xiàn)1號(hào)樣品。

5．點(diǎn)Marker到膠中：點(diǎn)擊第二行工具欄中的Add Marker Lane圖標(biāo)，出現(xiàn)Choose Database Gel Marker對(duì)話框，選中pGH - Marker，點(diǎn)擊OK，則Marker出現(xiàn)在2道

6．電泳：用鼠標(biāo)點(diǎn)擊右側(cè)窗口激活膠板，點(diǎn)擊第二欄工具欄中的雙箭頭，開始電泳，同時(shí)在旁邊顯示電泳時(shí)間，再次點(diǎn)擊雙箭頭，電泳停止。

7．計(jì)算兩條帶分開時(shí)間：選中沒有分開的條帶，點(diǎn)工具欄中的計(jì)算器Calculate Seperation Time，即可得到所需信息。

8．導(dǎo)出膠圖：激活膠板，點(diǎn)擊工具欄中的Camera工具,出現(xiàn)Camera對(duì)話框,選中需要導(dǎo)出的選項(xiàng)，結(jié)果可以到剪貼板，也可以保存成文件。到剪貼板后就可以在Word等文檔編輯器中粘貼。

（四）圖形操作

對(duì)于圖形展示的序列信息，我們可以對(duì)圖形進(jìn)行各種修飾和改動(dòng)，并最終導(dǎo)出需要的圖形，如果序列是質(zhì)粒，則可得到質(zhì)粒圖譜。

我們還是以SSPGH序列為例：

1．激活圖形欄，點(diǎn)擊工具欄中的Edit Picture。此時(shí)，點(diǎn)擊任意一個(gè)需要改動(dòng)的組件，則鼠標(biāo)變?yōu)樗姆较蚣^，按住左側(cè)則可以任意拖動(dòng)其位置。

2．點(diǎn)擊左鍵，選中Properties命令，則在Properties對(duì)話框中可以改變文字，字體，連線的粗細(xì)和顏色。

3．對(duì)于特征序列，我們還可改變其填充方式，箭頭方向等。

4．加入注釋：點(diǎn)擊工具欄中的回形針按鈕，出現(xiàn)Annotation對(duì)話框，輸入注釋文字（支持中、英文），如：“這是一個(gè)測試Sequence”。點(diǎn)擊確定后，文字就出現(xiàn)在圖示窗口中，同樣可以改變其位置、字體、顏色等。

5．修改完成后，點(diǎn)工具欄中的命令，同樣可以到剪貼板或文件。

二．組件AlignX

運(yùn)行AlignX后出現(xiàn)四個(gè)窗口，從上到下，從左到右分別為序列信息窗口，進(jìn)化樹窗口，同源比較圖示窗口和序列比較窗口。對(duì)于同源比較可以分為兩類：一類是兩個(gè)或幾個(gè)序列（包括DNA/RNA和蛋白質(zhì)序列）的比較，此時(shí)僅限于比較序列的相似性；另一類則是多個(gè)序列間的比較并得出系統(tǒng)進(jìn)化樹。

（一）導(dǎo)入外源序列的方法：點(diǎn)擊Project菜單中Add Files命令，選擇需要比較的序列文件，點(diǎn)擊打開按鈕，確認(rèn)是DNA/RNA還是Protein Sequence后，點(diǎn)擊Import按鈕就可以完成序列的導(dǎo)入任務(wù)。

（二）我們以程序本身提供的演示Project來講述AlignX的使用：

1．選擇Project菜單Open命令，找到Vector NTI的Demo Projects文件夾，打開DNA.apr文件；

2．在文本窗口中，使用鼠標(biāo)左鍵雙擊任一文件名，就可以得到該文件的所有基本信息；

3．建立一個(gè)新的比較策略并進(jìn)行比較：

①在文本窗口中，按住Ctrl鍵選中四個(gè)序列：AF××××

②點(diǎn)擊Alignment菜單中Alignment Setup命令，出現(xiàn)Alignment Setup對(duì)話框，在此對(duì)話框中有30個(gè)選項(xiàng)來確定最終比較結(jié)果展示方式，這里我們使用默認(rèn)值即可。

③點(diǎn)擊Alignment菜單中的Align Selected Sequence命令，片刻后程序完成比較并給出結(jié)果和進(jìn)化樹；

④在View菜單中，我們可以通過Edit Alignment命令來編輯比較結(jié)果，使用Display Setup命令來改變結(jié)果的展示方式和顏色等。

4．結(jié)果的導(dǎo)出：

①進(jìn)化樹的導(dǎo)出：激活進(jìn)化樹窗口，點(diǎn)擊工具欄中的Export Tree按鈕即可將進(jìn)化樹保存為.Ph文件，并可被其他樹編輯軟件所識(shí)別?；蛘唿c(diǎn)擊Edit菜單中的Camera命令，將圖像保存到剪貼板后在Word等文檔編輯軟件中粘貼；

②序列比較結(jié)果的導(dǎo)出；點(diǎn)擊Project菜單中的Export MSF Format命令，將結(jié)果保存為.msf文件后，用GeneDoc打開進(jìn)一步進(jìn)行編輯和修飾。

三．Contig Express

該組件讓您能夠直接從測序儀或其它文件格式（如GenBank和Fasta等）中導(dǎo)入序列，并將這些阿序列片段拼接成一個(gè)長片段。在拼接的過程中可以顯示測序圖譜，可以自動(dòng)去除載體序列及測序模糊序列。同時(shí)能在拼接的完成序列堿基的改動(dòng)。

1．點(diǎn)擊Project菜單中的Open命令，找到Demo Project文件夾中的DNA.cep文件。當(dāng)然我們也可以導(dǎo)入自己的序列，方法是點(diǎn)Project菜單中的Add Fragments命令，在此可以導(dǎo)入各種格式的文件。

2．建立拼接策略：點(diǎn)擊Assemble菜單中的Assembly Setup命令，出現(xiàn)Assembly Setup對(duì)話框，在此我們使用程序的默認(rèn)值，不作改動(dòng)。

3．使用Ctrl鍵將.abi文件全部選中，并點(diǎn)擊Assemble菜單中的Assemble Selected Fragment命令，程序自從完成拼接并出現(xiàn)一個(gè)Contig1的圖標(biāo)。

4．雙擊Contig1圖標(biāo)，出現(xiàn)另一個(gè)窗口展示一個(gè)8片段拼接結(jié)果。

5．激活序列窗口后，點(diǎn)擊View菜單中的Show All Chromatograms命令，就可以顯示每個(gè)序列的測序圖譜。

6．編輯圖譜及序列：如果想改變圖譜或序列上的某個(gè)堿基，就可以用框標(biāo)點(diǎn)擊該堿基，后輸入新的堿基即可。同時(shí)，在圖形窗口雙擊任一片段就可以打開一個(gè)新的窗口，在此窗口中可以對(duì)此序列進(jìn)行直接的改變了。

7．拼接結(jié)果的導(dǎo)出：點(diǎn)擊Edit菜單中的Select All命令選上拼接結(jié)果序列，在此點(diǎn)擊Edit菜單，使用Copy命令將拼接結(jié)果復(fù)制出來。

四．BioPlot

該組件可以完成對(duì)DNA、RNA和氨基酸序列的各種理化特性的分析，實(shí)際上在DNAStar中有兩個(gè)組件來分別完成對(duì)DNA/RNA和氨基酸序列的分析，其分析效果并不比BioPlot差，所以在此不再詳述。

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